ABSTRACT Rapid identification of vancomycin-resistant enterococci (VRE) can assist in choosing the appropriate treatment and preventing VRE spread. The performance of chromIDTM VRE agar was evaluated using 184 clinical isolates of Enterococcus spp. and reference strains. The test had a sensitivity of 95.52% but a low specificity of 30%.

Introduction. The genera Enterococcus, Staphylococcus and Streptococcus are recognized as important Gram-positive human pathogens. The aim of this study was to evaluate the performance of Vitek 2 in identifying Gram-positive cocci and their antimicrobial susceptibilities. Methods. One hundred four isolates were analyzed to determine the accuracy of the automated system for identifying the bacteria and their susceptibility to oxacillin and vancomycin. Results. The system correctly identified 77.9% and 97.1% of the isolates at the species and genus levels, respectively. Additionally, 81.8% of the Vitek 2 results agreed with the known antimicrobial susceptibility profiles. Conclusion. Vitek 2 correctly identified the commonly isolated strains; however, the limitations of the method may lead to ambiguous findings.

Atualmente, para extrair o DNA bacteriano, existem diversos métodos baseados em diferentes princípios. Entretanto, a quantidade e qualidade do DNA obtido por cada um destes métodos é variável e depende do tipo de micro-organismo em questão; os estafilococos coagulase-negativos (CoNS), por exemplo, possuem parede celular espessa difícil de lisar. O objetivo deste estudo foi comparar a quantidade e a qualidade do DNA extraído de isolados clínicos de CoNS utilizando quatro metodologias diferentes: dois protocolos caseiros e dois kits comerciais. A determinação da quantidade e da qualidade do DNA foi realizada por espectrofotometria. O DNA extraído também foi analisado em eletroforese em gel de agarose e por PCR. A concentração média de DNA foi mais alta no método de lise térmica (). Entretanto, com relação à qualidade do DNA, o kit comercial que utiliza um método de extração baseado em uma coluna de separação apresentou melhor resultado (média da relação A260/280 = 1,95). As quatro técnicas testadas forneceram DNA passível de amplificação por PCR, porém com diferentes rendimentos. A qualidade do DNA extraído de bactérias é importante, pois possibilita a realização de maior número de técnicas de biologia molecular e também armazenamento do material por maior período de tempo. Neste sentido, a técnica de extração por coluna de separação apresentou melhor desempenho frente aos CoNS.

Currently there are several methods to extract bacterial DNA based on different principles. However, the amount and the quality of the DNA obtained by each one of those methods is highly variable and microorganism dependent, as illustrated by coagulase-negative staphylococci (CoNS) which have a thick cell wall that is difficult to lyse. This study was designed to compare the quality and the amount of CoNS DNA, extracted by four different techniques: two in-house protocols and two commercial kits. DNA amount and quality determination was performed through spectrophotometry. The extracted DNA was also analyzed using agarose gel electrophoresis and by PCR. 267 isolates of CoNS were used in this study. The column method and thermal lyses showed better results with regard to DNA quality (mean ratio of A260/280 = 1.95) and average concentration of DNA (), respectively. All four methods tested provided appropriate DNA for PCR amplification, but with different yields. DNA quality is important since it allows the application of a large number of molecular biology techniques, and also it's storage for a longer period of time. In this sense the extraction method based on an extraction column presented the best results for CoNS.

INTRODUÇÃO: A atividade dos antimicrobianos em biofilmes depende do seu peso molecular, de cargas positivas, coeficiente de permeabilidade e atividade bactericida. Vancomicina é a escolha primária para o tratamento de infecções causadas por Staphylococcus aureus resistentes à meticilina (MRSA) e rifampicina possui interessante propriedade antibiofilme, apesar da sua efetividade ainda ser fracamente definida. MÉTODOS: Foi investigada a atividade da rifampicina sozinha e em combinação com vancomicina frente à MRSA formadores de biofilme, utilizando o método das microplacas com diluição seriada e recuperação bacteriana em biofilme após exposição antimicrobiana. RESULTADOS: Concentração inibitória minima (MIC) e concentração bactericida mínima (MBC) para vancomicina e rifampicina foi de 0,5-1mg/l e 0,008-4mg/l; 1-4mg/l e 0,06-32mg/l, respectivamente. Biofilmes maduros foram expostos à vancomicina e rifampicina, e a concentração mínima para erradicar o biofilme (MBEC) foi 64-32.000 e 32-512 vezes maior do que para células planctônicas, respectivamente. A combinação de vancomicina (15mg/l) com rifampicina (6-diluições maior do que o MIC de cada isolado) não atingiu erradicação do biofilme in vitro, porém apresentou capacidade inibitória do biofilme formado (redução de 1,43 e 0,56log10 UFC/ml para produtores fracos e fortes, respectivamente; p<0,05). CONCLUSÕES: Rifampicina sozinha falhou em efetivamente matar MRSA formadores de biofilme, demonstrando fraca habilidade para erradicação de biofilmes maduros comparado com vancomicina.

INTRODUCTION: Antimicrobial activity on biofilms depends on their molecular size, positive charges, permeability coefficient, and bactericidal activity. Vancomycin is the primary choice for methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) infection treatment; rifampicin has interesting antibiofilm properties, but its effectivity remains poorly defined. METHODS: Rifampicin activity alone and in combination with vancomycin against biofilm-forming MRSA was investigated, using a twofold serial broth microtiter method, biofilm challenge, and bacterial count recovery. RESULTS: Minimal inhibitory concentration (MIC) and minimal bactericidal concentration for vancomycin and rifampicin ranged from 0.5 to 1mg/l and 0.008 to 4mg/l, and from 1 to 4mg/l and 0.06 to 32mg/l, respectively. Mature biofilms were submitted to rifampicin and vancomycin exposure, and minimum biofilm eradication concentration ranged from 64 to 32,000 folds and from 32 to 512 folds higher than those for planktonic cells, respectively. Vancomycin (15mg/l) in combination with rifampicin at 6 dilutions higher each isolate MIC did not reach in vitro biofilm eradication but showed biofilm inhibitory capacity (1.43 and 0.56log10 CFU/ml reduction for weak and strong biofilm producers, respectively; p<0.05). CONCLUSIONS: In our setting, rifampicin alone failed to effectively kill biofilm-forming MRSA, demonstrating stronger inability to eradicate mature biofilm compared with vancomycin.